Amaç: Bu çalışmanın amacı, Enterococcus faecalis ile kontamine edilmiş gutta-percha konilerinin hızlı dezenfeksiyonunda, farklı karıştırma protokollerinde uygulanan %2,5 kalsiyum hipoklorit [Ca(OCl)2], %2,5 sodyum hipoklorit (NaOCl) ve %2 klorheksidin (CHX) solüsyonlarının etkinliğini karşılaştırmaktır. Yöntemler: Her bir solüsyonun E. faecalis’e karşı antibiyofilm etkinliği öncelikle hücre kültürü çukurlarında test edilmiştir. Ardından, bakteri süspansiyonuyla kontamine edilmiş elli dört gutta-percha konisi eşit şekilde üç gruba ayrılarak (n=18), üç solüsyondan biri kullanılarak (%2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 veya %2 CHX) dezenfeksiyona tabi tutulmuştur. Her grup, uygulama yöntemi (karıştırma yok, ultrasonik karıştırma veya Easy Clean ile karıştırma) ve her solüsyona maruz kalma süresi (1 veya 5 dakika) açısından daha da alt gruplara ayrılmıştır (n=6). Dezenfeksiyon sonrası örnekler bulanıklık açısından incelenmiş, canlı koloni sayısı değerlendirilmiş ve veriler tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ile Tukey’in post hoc testleri kullanılarak analiz edilmiştir (α = 5%). Sonuçlar: %2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX solüsyonları, biofilm oluşumunu belirgin biçimde yok etmiş ve inhibe etmiştir (p < 0,0001). Canlı koloni sayısını azaltma açısından ise, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX tüm uygulama yöntemleri kapsamında, hem 1 hem de 5 dakika süreyle etkili olmuştur (p < 0,05). Buna karşılık, %2,5 NaOCl yalnızca ultrasonik karıştırma altında 5 dakika boyunca etkili olmuştur (p < 0,05). Densitometre ölçümleri, gruplar arasında istatistiksel olarak anlamlı bir fark göstermemiştir (p > 0,05). Sonuçlar: Genel olarak, sonuçlar simüle edilen deneysel koşullar altında gutta-percha konilerinin dezenfeksiyonunda %2 CHX ve %2,5 Ca(OCl)2 solüsyonlarının daha üstün performans sergilediğini ortaya koymuştur.
Anahtar kelimeler: Enterococcus faecalis. Kalsiyum bileşikleri. Klorheksidin. Gutta-percha. Sodyum hipoklorit.

Giriş

Gutta-percha, boyutsal kararlılığı yeterli, radyopaklığı tatmin edici, biyokompatibildir ve termoplastiktir; bu nedenle, endodontik sızdırmazlık malzemesiyle birlikte kök kanal tedavilerinde tarihsel olarak kullanılan bir dolgu malzemesidir. Gutta-percha, sahip olduğu yapı gereği ıslak veya kuru ısı sterilizasyon prosesinden geçemez. Bu nedenle, antiseptik solüsyonlara batırılarak yapılan kimyasal dezenfeksiyon önerilir.

Gutta-percha konilerini dezenfekte etmek için çeşitli kimyasal ajanlar önerilmiştir; bunlar arasında sodyum hipoklorit (NaOCl) ve klorheksidin (CHX) yer alır. İdeal bir dezenfektan, koni yapısını bozmadan hızlı bir dezenfeksiyonu sağlamalıdır3. NaOCl, endodontide dünya çapında en yaygın olarak kullanılan antimikrobiyal irrigasyon solüsyonudur; etkili olmasına rağmen, koniler üzerinde kalıntı kristallerin birikmesinin sealer ile bağlanmayı zorlaştırarak mikrosızıntıya yol açabileceğine dair kanıtlar mevcuttur. Önceki çalışmalar ayrıca CHX’nin gutta-percha konilerini dezenfekte etmede etkili olduğunu da bildirmiştir. Ancak NaOCl başlıca irrigasyon solüsyonu olarak kullanıldığında, koni yüzeyindeki herhangi bir CHX kalıntısı, kök kanalı içindeki NaOCl kalıntılarıyla kimyasal olarak etkileşebilir; bu durum, yetersiz kurutma veya anatomik karmaşıklıklar nedeniyle ortaya çıkabilir. Bu etkileşim, tedavi edilen kök kanalının sızdırmazlığını bozan toksik bir bileşik olan para-kloroanilin oluşumuna yol açabilir.

Son zamanlarda, kalsiyum hipoklorit [Ca(OCl)2]’nin; tatmin edici antimikrobiyal etkisi ve doku çözme kapasitesi, dentinin özelliklerine olan daha yüksek uyumluluğu ile yapıştırıcı işlemlerinde daha az tahriş yaratması nedeniyle Endodonti 2’de kullanımı değerlendirilmektedir. Ancak söz konusu potansiyel rağmen, gutta-percha konilerini dezenfekte etmede Ca(OCl)2’nin etkinliğini değerlendiren çalışmalar oldukça azdır ve bu amaçla kullanımının geçerliliğini doğrulamak için mutlaka yürütülmesi gerekmektedir. Bunun yanı sıra, bu bağlamda dezenfeksiyonu artırmaya yönelik farklı karıştırma yöntemlerinin etkisine ilişkin ek araştırmalar da sınırlıdır. Son olarak, endodontik başarısızlıklarda tespit edilen başlıca mikroorganizma E. faecalis olduğundan, bunun yok edilmesinde kullanılan solüsyonların etkinliğinin değerlendirilmesi son derece önemlidir. Bu nedenle, bu çalışmanın amacı; E. faecalis ile kontamine edilmiş gutta-percha konilerini dezenfekte etmede, farklı karıştırma protokollerinde uygulanan %2,5’lik Ca(OCl)2, %2,5’lik NaOCl ve %2’lik CHX’in etkinliğini karşılaştırmaktır. Çalışmada, uygulama yöntemi ne olursa olsun, farklı solüsyonların antibakteriyel etkisi açısından arasında herhangi bir fark bulunmayacağı yönünde bir sıfır hipotez benimsenmiştir.

Malzemeler ve Yöntemler

Bakteriyel suş ve kültürel koşullar

Deneylerde kullanılan suş, Amerikan Tip Kültür Koleksiyonu’ndan temin edilen E. faecalis (ATCC 29212) idi. Mikroorganizmalar gliserol içeren bir besi ortamında korunmuş ve −80°C’de saklanmıştır. Kullanılmadan önce örnek çözüldükten sonra Beyin Kalp Infüzyonu (BHI) bulamaç ortamına aşılanmış ve 24 saat boyunca inkübe edilmiştir.

Minimum inhibitory ve minimum bakterisidal konsantrasyonların belirlenmesi

Minimum inhibitory konsantrasyon (MİK), 96 kuyucuklu bir plakta, brot mikrodilüsyon yöntemi kullanılarak belirlendi. Minimum bakterisidal konsantrasyonu tespit etmek için… Tahmin (MBC), her kuyudan 1 μL alınıp Mueller-Hinton agar üzerine ekilerek 37°C’de anaerobik koşullarda 24 saat boyunca inkübe edildi. Daha sonra koloniler tanımlandı ve mikrobiyal büyümenin gözlenmediği en düşük konsantrasyon MBC olarak kaydedildi.

Biyofilmin oluşumu Biyofilm, daha önce tanımlanmış koşulların modifikasyonlarıyla üretilmiştir. Uygulanan tedaviler arasında, %2,5’lik Ca(OCl)2, %2,5’lik NaOCl veya %2’lik CHX’nin MIC, 2 katı MIC ve 4 katı MIC değerleri yer almıştır. Kontrol amaçlı olarak, pozitif kontrol olarak yalnızca Mueller-Hinton besi ortamında bulunan E. faecalis suşu kullanılmış; negatif kontrol ise sadece Mueller-Hinton besi ortamından oluşmuştur.

Kristal morfol analizi Biyokütle, daha önce açıklanan şekilde kristal morfol boyama tekniği kullanılarak nicelendirilmiştir. Antibiyo film etkinliği, pozitif kontrol (Mueller-Hinton besi suyu + E. faecalis) ile tedaviler arasındaki optik yoğunluk farkının ölçülmesi yoluyla değerlendirilmiştir.

Biyofilm inhibisyon deneyi 2,5% Ca(OCl)2, 2,5% NaOCl ve 2% CHX’nin antiadhezyon özellikleri mikroplak biyofilm deneyi kullanılarak değerlendirildi. E. faecalis, Mueller-Hinton besi suyu ve tedavi çözeltisi içeren bir süspansiyon 37°C’de anaerobik koşullarda 24 saat boyunca inkübe edildi. Deney, önceki bölümde açıklanan şekilde gerçekleştirildi. E. faecalis içeren Mueller-Hinton besi suyu pozitif kontrol olarak kabul edilirken, inhibisyon yüzdesi Optik yoğunluk testi/Optik yoğunluk kontrolü × 100 formülüyle hesaplandı.

Koloni oluşturan birimlerin (CFU) sayımı: Yöntem, Pauletto ve ark. tarafından belirtilen yaklaşımı izlemiştir. Doksan sekiz adet gutta-percha konisi (Dentsply Maillefer, Ballaigues, İsviçre) kullanılmış ve aseptik koşullarda açılmıştır. Her bir gutta-percha konisi, mikro tüp içindeki bakteriyel süspansiyonun içine 37°C’de 48 saat süreyle daldırılarak ayrı ayrı kontamine edilmiştir. Steriliteyi sağlamak ve kontaminasyonu izlemek amacıyla, sterilizasyon sonrası steriliteni doğrulamak için iki koni besleyici ortama plaklanmıştır. Ayrıca, kontaminasyonun yokluğunu teyit etmek üzere her 24 saatte bir üçer koni plaklanmıştır.

Olumlu kontroller; tedavi edilmemiş salin içinde batırılmış 18 gutta-percha konisi; negatif kontroller ise her malzemeden alınan 18 temiz örnekten oluştu. Geri kalan 54 koni, dekontaminasyon için kullanılan solüsyona göre üç deneysel gruba ayrıldı: %2,5 NaOCl (n=18), %2,5 Ca(OCl)2 2 (n=18) veya %2 CHX (n=18). Her grup farklı yöntemlerle işlendi: karıştırma olmadan (3 koni 1 dakika ve 3 koni 5 dakika), ultrasonik karıştırma (3 koni 1 dakika ve 3 koni 5 dakika) veya Easy Clean (Easy Equipamentos Odontológicos, Belo Horizonte, MG, Brezilya) ile karıştırma (3 koni 1 dakika ve 3 koni 5 dakika). Karıştırma prosedürü kapsamında, Easy Clean #25.04 plastik dosya (Easy Equipamentos Odontológicos) 20.000 devir/dakika hızında bir el aletine bağlanırken, E1 Irrisonic ucu (Helse Ultrasonic, Ribeirão Preto, SP, Brezilya) ise bir ultrasonik cihaza (Sonic Laxis BP LED, Schuster, Santa Maria, RS, Brezilya) güç seviyesi %20 olarak eşleştirildi.

Tedavi sonrası, tüm örnekler 2 mL’lik Mueller-Hinton besi suyu içeren bir mikro tübün içine yerleştirilerek 37°C’de 48 saat boyunca inkübe edildi. Her deney ve kontrol grubundan örnekler rastgele seçilerek agar plaklarına ekildi, 37°C’de inkübe edildi ve 2 gün sonra büyüme açısından incelendi. Mikrobiyal büyümenin gözlemlenmesi durumunda, bakteriler koloni morfolojisi ve Gram boyaması ile E. faecalis için doğrulandı. Hücre sayısı, eklendikten sonra belirlenen koloni formasyon birimleri (CFU) üzerinden hesaplandı.

Densitometre ile ölçüm Bakterilerin büyümesi, Vági ve ark. tarafından yapılan ve bazı değişikliklerle uyarlanan yöntem doğrultusunda, bakteri süspansiyonunun optik yoğunluğunun densitometrik olarak ölçümlenmesi yoluyla izlenmiştir. Spektrofotometreye 3 ml besleyici sıvı ortam alınmış; incelenen her bir örneğe karşılık iki erlenmeyer hazırlanmıştır. Kontrol olarak yalnızca ortam içeren erlenmeyer ölçülmüştür. Ayrıca, ortama herhangi bir ek madde eklenmeden bir bakteri kontrolü de uygulanmıştır.

Tedavilerin ardından bakteri yoğunluğunu elde etmek için, numunelerin optik yoğunluğu 570 nm dalga boyunda densitometri yöntemiyle (Carl-Zeiss, Gottingen, Almanya) ölçüldü. Bakterilerin büyümesi, suspansiyonun bulanıklığı şeklinde ortaya çıkar ve bu durum optik yoğunluğun yükselmesiyle izlenebilir. İnhibisyon yüzdesi, ölçüm sırasında alınan numune optik yoğunluğu (ODX) ile kontrol numunesinin optik yoğunluğu (ODAC) arasındaki oran olarak tanımlanır.

Taramalı elektron mikroskobu (SEM) Taramalı elektron mikroskobu görüntülemeleri, %2,5’lik Ca(OCl)2’nin etkisini değerlendirmek amacıyla gerçekleştirildi. 35 mm boyutundaki polistiren plakalar üzerinde oluşan biyofilmin, farklı tedavi biçimleri ve sürelerde uygulanan %2,5’lik Ca(OCl)2 sonrasında 2 SEM yöntemiyle analizi yapıldı. Plakalardaki biyofilim distile su ile durulanıp, 60°C sıcaklıkta 1 saat boyunca fırında sabitlendi. Daha sonra örnekler altın kaplama işlemine tabi tutuldu (sputter kaplama 108A; Cressington Scientific Instruments Inc., Watford, İngiltere). JSM-6360 taramalı elektron mikroskobu (JEOL, Tokyo, Japonya) kullanıldı.

İstatistiksel analiz: Shapiro-Wilk testi, toplanan değerlerin normal dağılıma sahip olduğunu göstermiştir. Bu nedenle, tüm veriler tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ve Tukey’in post hoc testleri ile değerlendirilmiştir. Biyofilmin inhibisyonu ve yok edilmesine ilişkin deneyde, pozitif kontrolle karşılaştırıldığında p < 0,05 (*), p < 0,01 (**), p < 0,001 (***) ve p < 0,0001 (****) düzeyleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir. Yaşayan kolonilerin sayımı ve antibakteriyel etkinlik açısından ise, aynı karıştırma sürecindeki (a) salin ile tedaviler arasında ve aynı tedavinin farklı karıştırma süreçleri arasında (b) karşılaştırıldığında p < 0,05 düzeyi istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir. Tüm analizler GraphPad Prism 8.0.1 yazılımı (GraphPad Software Inc., San Diego, CA, ABD) kullanılarak gerçekleştirilmiş olup.

Sonuçlar

Minimum inhibitory ve minimum bakterisidal konsantrasyonların belirlenmesi Tablo 1, 2 E. faecalis suşu üzerinde NaOCl %2,5, Ca(OCl)2 %2,5 ve CHX %2’nin MIC ve MBC değerlerini göstermektedir. Her iki indekste de CHX en üstün etkinliği sergilemiştir.

Tablo 1. E. faecalis’e karşı %2,5’lik NaOCl, %2,5’lik Ca(OCl)2 ve %2’lik CHX’nin asgari inhibe edici konsantrasyonu (MIC) ile asgari bakterisitik konsantrasyonları (MBC)

Biyofilmin inhibisyonu ve yok edilmesi deneyi: %2,5’lik NaOCl ile %2,5’lik Ca(OCl)2, kontrol grubuna kıyasla belirgin biyofilim yok etme etkisi gösterirken (p < 0,01), %2’lik CHX ise tatminkar bir etki göstermedi (p > 0,05). En iyi performansı sergileyen bileşikler, biyofilmi %83,5 oranında azaltan 4 kat MIC konsantrasyonundaki (%2,6 mg/ml) %2,5’lik NaOCl ve biyofilmi %76,7 oranında yok eden 2 kat MIC konsantrasyonundaki (%0,625 mg/ml) %2,5’lik Ca(OCl)2 oldu (p < 0,0001) (Şekil 1A). Biyofilmin inhibisyonu açısından en iyi sonuçları veren bileşik, 0,5 kat MIC konsantrasyonundaki (%0,012 mg/ml) %2’lik CHX olup, biyofilmi %87,6 oranında inhibe etti (p < 0,0001) (Şekil 1B). Veriler, kontrol grubuyla karşılaştırıldığında istatistiksel olarak anlamlı kabul edildi.

Şekil 1. Farklı konsantrasyonlarda uygulanan 2,5% NaOCl, 2,5% Ca(OCl)2 ve 2% CHX ile tedavi edilen E. faecalis’in antibiyofilmlilik etkinliği (A) ve biofilmin inhibisyonu (B). Veriler ortalamayla ± standart sapma olarak ifade edilmiştir. Tukey testiyle birlikte varyans analizi (ANOVA) gerçekleştirilmiş olup, pozitif kontrolle karşılaştırıldığında p < 0,05 (*) , p < 0,01 (**), p < 0,001 (***) ve p < 0,0001 (****) değerleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir.

Şekil 2. E. faecalis’e karşı, farklı karıştırma sürelerinde; 1 dakika (A) ve 5 dakika (B) süresince, %2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX ile tedavi edilen biyofilmlerin canlı koloni sayımı. Ayrıca, %2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX’in E. faecalis’e karşı farklı karıştırma sürelerinde; 1 dakika (C) ve 5 dakika (D) süresince gösterilen antibakteriyel etkinliği densitometre yöntemiyle değerlendirilmiştir. Veriler ortalamayla ± standart sapma şeklinde ifade edilmiştir. Anova analizi ardından Tukey testi uygulanmıştır. P < 0,05 değerleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir: (a) aynı karıştırma sürecindeki salin ile tedaviler arasında; (b) aynı tedavinin farklı karıştırma süreçleri arasında ultrasonik karıştırma kullanıldığında.

Koloni oluşturan birimlerin (CFU) sayımı: 1 dakikalık maruziyet süresinde, uygulama yöntemi ne olursa olsun, %2,5’lik NaOCl ile yapılan tedaviye karşı salin çözeltisinde herhangi bir fark gözlenmemiştir (p > 0,05). %2,5’lik Ca(OCl)2 ve %2’lik CHX ile yapılan tedavilerde ise, salin çözeltisiyle karşılaştırıldığında anlamlı bir azalma belirlenmiştir (p < 0,05). 5 dakika boyunca sarsıldığında, ultrasonik karıştırma altında NaOCl ile yapılan tedavi, salin çözeltisine kıyasla anlamlı bir azalmaya yol açmış; ayrıca 1 dakikada görülen diğer sonuçlar da korunmuştur (p < 0,05). Sayım sonuçları Şekil 2A ve Şekil 2B’de gösterilmiştir.

Densitometre ile ölçüm Her durumda, büyüme eğrileri salin ile elde edilenlerle karşılaştırıldı. Tüm tedaviler, salinli kontrol grubuyla kıyaslandığında optik yoğunlukta belirgin bir azalma gösterdi; yalnızca karıştırılmayan ve Easy clean karıştırma yöntemi kullanılan 2,5% NaOCl çözümünde bu azalma gözlenmedi. Test edilen her iki zaman diliminde de 2,5% Ca(OCl)2 veya CHX ile tedavi edildiğinde, farklı karıştırma süreçleri arasında yoğunluk azalmasında istatistiksel olarak anlamlı bir fark bulunmadı; bkz. Şekil 2C ve 2D. 2

Taramalı elektron mikroskopisi Şekil 3, biyofilmin yıkımını göstermektedir. SEM fotoğrafları elde edilen sonuçları vurgulamaktadır.

Şekil 3. Salin ile 1 (A) ve 5 (B) dakika; ayrıca farklı karıştırma koşullarında %2,5 Ca(OCl)2 ile tedavi edilen E. faecalis biofilmin MEC’leri – karıştırılmaması durumunda 1 (C) ve 5 (D) dakika; ultrasonik karıştırma ile 1 (E) ve 5 (F) dakika; ve Easy clean karıştırma ile 1 (G) ve 5 (H) dakika.

Tartışma Bu çalışma, farklı karıştırma yöntemleri kullanılarak Ca(OCl)2 solüsyonu ile gutta-percha konilerinin hızlı dezenfeksiyonunu değerlendirmekte; sonuçlar, bu amaç için tarihsel olarak kullanılan NaOCl ve CHX solüsyonlarıyla karşılaştırılmaktadır. Bulgular, değişik antibakteriyel etkilere işaret etmektedir. Bu in vitro çalışmada simüle edilen tüm senaryolarda E. faecalis’e karşı etkiler, başlangıçta formüle edilen sıfır hipotezin reddedilmesine yol açmıştır.

Kültür çanaklarında yapılan testlerin sonuçları, E. faecalis’in oluşturduğu biyofilmi inhibe etmede en etkili çözümün %2’lik CHX olduğunu; ayrıca %2,5’lik NaOCl ve %2,5’lik Ca(OCl)2 çözümlerinin ilgili mikrobiyal iki türü ortadan kaldırmada daha yüksek etkiye sahip olduğunu göstermiştir. Endodontik biyofilm karşıtı antibakteriyel etkinin hangi çözeltide daha üstün olduğuna dair literatürde bazı tartışmalar olsa da, bu senaryoda klorlu çözülmelerin daha etkili olduğu varsayılabilir; zira bunlar güçlü oksidantlardır ve iyonik disosiasyon sırasında büyük miktarda hipokloröz asit salgılar; bu da çözeltinin antibakteriyel etkisinin doğrudan sorumlusu olan etken maddedir. Bu bağlamda, mikroorganizmalar için vazgeçilmez olan enzimler irreversible şekilde okside edilerek bakteriyal hücrenin metabolik fonksiyonları devre dışı bırakılır ve böylece hücre ölümü oluşur.

Gutta-percha konilerinin yüzeyindeki CFU’lar açısından, bulgularımız şunu vurgulamaktadır: 1 dakikalık dekontaminasyon süresi için, uygulanan yöntemden bağımsız olarak 2,5% NaOCl kullanımı, kontrol grubu ile karşılaştırılabilir verilerle birlikte, dekontaminasyon açısından etkili değildi. 2,5% Ca(OCl)2 ve 2% CHX solüsyonları ise, tüm uygulama yöntemleri bakımından kontrol grubuna göre etkilidir. 5 dakikalık dekontaminasyon süresi için de aynı sonuçlar devam etmiş; buna ek olarak, ultrasonik olarak karıştırılan 2,5% NaOCl grubunun kontrol grubundan daha iyi performans gösterdiği gözlenmiştir. NaOCl’in hücre kültürü kuyularındaki E. faecalis’i yok etme konusunda etkili sonuçlar verdiği ve gutta-percha konilerini dekontamine etmede yeterli performans sergilemediği tartışmalıdır; ancak önceden yürütülmüş çalışmalar, irrigantların ve kök kanalı ilaçlarının antibakteriyel etkisinin yüzey türü ve bileşenlerinden etkilenebileceğini vurgulamaktadır. Bu nedenle, bu öneriyi daha iyi aydınlatmak amacıyla ek araştırmaların yapılması gerekmektedir.

Bu çalışmanın bulgularının aksine, önceki bir araştırma Candida albicans ile kontamine olmuş gutta-percha konilerini dezenfekte etmede üç solüsyon için benzer sonuçlar göstermiştir. Bu nedenle, solüsyonların etkinliğinin test edilen mikroorganizmaya göre değişebileceğini düşünmek mantıklıdır; gelecekteki araştırmalar bu yönü incelemeli ve endodontik enfeksiyonlarda yaygın olarak görülen mikroorganizmaları temsil eden karma biyofilmleri simüle etmelidir. 2% CHX’in olumlu performansına gelince, bu bulgu muhtemelen sonuçlarımızda açıklanan MBC’siyle justified edilebilir ve bu da önceki çalışmalarla uyum içindedir3. 2,5% Ca(OCl)2’nin etkinliği ise Ca(OCl)2’nin NaOCl’e kıyasla daha fazla aktif klor içermesi ve iyonik disosiasyonu sonucunda daha yüksek miktarda hipokloröz asit salınmasına bağlı olabilir; bu da solüsyonun antibakteriyel etkisinin daha güçlü olmasını sağlayabilir. Buna paralel olarak, bakteri yoğunluğu bulgularımız da 2,5% Ca(OCl)2 ve 2% CHX kullanıldığında bakteri azalmasında daha belirgin bir eğilim göstermektedir. SEM görüntüleri, Ca(OCl)2 için elde edilen sonuçları vurgulamaktadır. NaOCl’in dünya çapında kök kanalının ana irigasyon solüsyonu olarak en yaygın kullanılan çözüm olduğu ve NaOCl ile CHX arasında kimyasal bir etkileşim oluştuğu; bu etkileşim sonucunda kök dolgusunun kalitesini bozan toksik bir bileşik (para-kloroanilin) ortaya çıktığı göz önüne alındığında, bulgularımız doğrultusunda gutta-percha’nın hızlı dezenfeksiyonu için Ca(OCl)2 kullanımını önermek makul görünmektedir. koniler, çünkü NaOCl’e kıyasla daha iyi performans göstermiştir. Öte yandan, bulgularımız ışığında, kök kanalının ana irriğanı olarak CHX’i kullanan profesyoneller için, konileri dezenfekte etmek üzere aynı solüsyonu kullanmak daha pratik hale gelmektedir. Bir diğer olasılık olarak, CHX ile Ca(OCl)2 arasındaki kimyasal etkileşimin, bir çökelme oluşmasına neden olsa da, 2 para-kloroanilin üretmediği vurgulanmaktadır. Bu nedenle, ana irriğan olarak CHX kullanılan durumlarda konileri dezenfekte etmek için potansiyel uygulanabilirliğini doğrulamak veya reddetmek amacıyla, oluşan bileşiğin doğruluğunu ve kök kanalı sızdırmazlığını etkileyip etkilemediğini ortaya koymak için daha fazla çalışma yapılması gerekmektedir.

Genel olarak, gutta-percha konilerini dekontamine etmek amacıyla test çözeltisinin karıştırılma yöntemleri açısından istatistiksel olarak anlamlı farklılıklar gözlemlenmedi. Mevcut literatürde gutta-percha konilerinin dezenfeksiyonunda karıştırma yöntemlerine ilişkin çalışmaların eksik olduğunu vurgulamak gerekir; bu durum bulguların karşılaştırılmasını zorlaştırmaktadır. Bununla birlikte, daha önce yapılan bir sistematik inceleme, irigasyon solüsyonunun karıştırılıp karıştırılmaması arasında kök kanalı dezenfeksiyonunda anlamlı bir fark bulunmadığını göstermiş; bu da dekontaminasyonda asıl rolün irigasyon solüsyonu ve onun özelliklerinde yattığını ortaya koymuştur.

Bulgularımız, NaOCl’e kıyasla üstün performansı nedeniyle kütapera konilerinin hızlı dezenfeksiyonu için Ca(OCl)2’nin önerilebileceğini öne sürse de, bu tavsiyenin kullanılan malzemeler ve bakteri türlerinden etkilenebileceğini de dikkate almak önemlidir. Bu, söz konusu ön çalışmamızın bir sınırlılığıdır. Tükürük çok sayıda ve çeşitli bakteri türü içerdiğinden, bu sonuçların doğrulanması için farklı bakteri türlerini de içeren daha fazla araştırma gerekmektedir. Son olarak, Ca(OCl)2’nin kütapera konilerinin mikro yapısına etkisi ile bunun endodontik tedavi açısından olası sonuçları değerlendirilmek üzere ek çalışmalar yürütülmelidir.

Bu in vitro çalışmanın sınırlılıklarına rağmen, gutta-percha konilerinin dekontaminasyonu için Ca(OCl)2’nin kullanımı, çözeltinin kimyasal bileşiminden kaynaklanan destekle, umut verici bir alternatif olarak görünmektedir. İyonik disosiasyon sırasında Ca(OCl)2 iki molekül hipokloröz asit (HOCl) salgılarken, NaOCl yalnızca bir molekül salgılar. Bu nedenle, Ca(OCl)2’de klorun konsantrasyonu daha yüksektir ve bu da dezenfeksiyon kapasitesini artırmaktadır. Bununla birlikte, bu çözeltinin endodontik uygulamada kullanılması, daha sağlam bulgular elde etmek ve onun endodontik prosedürlere potansiyel olarak entegre edilmesine yön vermek amacıyla klinik araştırmalar gerektirmektedir.

Sonuç olarak, bu çalışmanın sonuçları, E. faecalis tarafından kontamine edilmiş gutta-percha konilerin hızlı dezenfeksiyonunda %2’lik CHX ile %2,5’lik Ca(OCl)2’nin etkinliğini doğrulamaktadır; karıştırma gerektirmeyen uygulama yöntemleri, ultrasonik karıştırma ve Easy Clean ile karıştırma arasında istatistiksel olarak anlamlı bir fark bulunmamaktadır. %2,5’lik NaOCl ise yalnızca 5 dakika süren ultrasonik karıştırma sonrasında etkili olmuştur.

Teşekkürler Destekleri nedeniyle Yükseköğretim Personeli Yetkinleştirme Koordinasyonu (CAPES)’e teşekkür ederiz.

Çıkar çatışması beyanı Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması bulunmadığını beyan ederler.

Veri erişilebilirliği Bu makaleye ilişkin veri setleri, ilgili yazar tarafından talep edildiğinde sağlanacaktır.

Yazar Katkısı: Guilherme Pauletto: Konseptleme; veri yönetimi; araştırma; metodoloji; yazılım; doğrulama; görselleştirme; orijinal taslak yazım; inceleme ve düzenleme. Pedro Henrique Fortes Guerim: Veri yönetimi; araştırma; metodoloji; yazılım; doğrulama; görselleştirme; inceleme ve düzenleme. Arthur Brites Barbosa: Veri yönetimi; araştırma; metodoloji; yazılım; doğrulama; görselleştirme; inceleme ve düzenleme. Natália de Freitas Daudt: Veri yönetimi; metodoloji; doğrulama; inceleme ve düzenleme. Leonardo Quintana Soares Lopes: Veri yönetimi; metodoloji; yazılım; formel analiz; doğrulama; orijinal taslak yazım; inceleme ve düzenleme. Patrícia Kolling Marquezan: Konseptleme; araştırma; metodoloji; formel analiz; proje yönetimi; kaynaklar; yazılım; denetim; doğrulama; görselleştirme; orijinal taslak yazım; inceleme ve düzenleme. Carlos Alexandre Souza Bier: Konseptleme; fon sağlama; araştırma; metodoloji; proje yönetimi; kaynaklar; yazılım; denetim; doğrulama; görselleştirme; inceleme ve düzenleme. Tüm yazarlar, makalenin nihai versiyonunu aktif olarak gözden geçirmiş ve onaylamıştır.

Atıf ve kapsam

Pauletto G, Guerim PHF, Barbosa AB, Daudt NF, Lopes LQS, Marquezan PK, ve ark. Enterococcus faecalis ile kontamine olmuş gutta-percha konilerinin kalsiyum hipoklorit, sodyum hipoklorit ve klorheksidin kullanılarak dezenfeksiyonu. Brezilya Ağız ve Diş Hizmetleri Dergisi. 2026;25:e267486. https://doi.org/10.20396/bjos.v25i00.8677486

Creative Commons Atıf 4.0 Uluslararası Lisansı (CC BY 4.0) kapsamında yeniden yayımlanmıştır: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.

Bu bağımsız in-vitro çalışma, ürünün test materyalleri için kimyasal dezenfeksiyon protokollerini değerlendirmektedir. Çalışma, Hygendo Gutta Percha Uçları’nın performansını, antimikrobiyal etkinliğini, dezenfeksiyon verimliliğini veya klinik sonucunu test etmemekte, değerlendirmemekte, onaylamamakta ve belirlememektedir. Hygendo Kataloğu görseli ayrı bir marka malzemesidir ve çalışmaya dahil değildir.

Herhangi bir üçüncü taraf ürününün veya cihazının adları, yalnızca çalışma metodolojisini sadakatle yeniden üretmek veya tercüme etmek amacıyla yer almaktadır; bunlar Hygendo tarafından yapılan bir karşılaştırma, tavsiye veya bağlılık ifadesi değildir.

E-posta:
info@hygendo.com

WhatsApp:
8613719176340

Tel:
+86 13719176340

Adres:
Çin, Guangdong Eyaleti, Guangzhou Şehri, Liwan İlçesi, Huawan Yolu, No. 650, Oda 218