Amaç: Bu çalışmanın amacı, Enterococcus faecalis ile kontamine edilmiş gutta-percha konilerinin hızlı dezenfeksiyonunda, farklı karıştırma protokollerine göre uygulanan %2,5 kalsiyum hipoklorit [Ca(OCl)2], %2,5 sodyum hipoklorit (NaOCl) ve %2 klorheksidin (CHX) solüsyonlarının etkinliğini karşılaştırmaktır. Yöntemler: Her bir solüzyonun E. faecalis’e karşı antibiyofilim etkinliği öncelikle hücre kültürü çukurlarında test edilmiştir. Ardından, bakteri süspansiyonuyla kontamine edilmiş elli dört gutta-percha konisi eşit şekilde üç gruba ayrılarak (n=18), üç solüzyondan biri kullanılarak (%2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 veya %2 CHX) dezenfeksiyona tabi tutulmuştur. Her grup, uygulama yöntemi (karıştırma yok, ultrasonik karıştırma veya Easy Clean ile karıştırma) ve her solüzyona maruz kalma süresi (1 veya 5 dakika) açısından daha da alt gruplara ayrılmıştır (n=6). Dezenfeksiyon sonrası örnekler bulanıklık açısından incelenmiş, canlı koloni sayısı değerlendirilmiş ve veriler tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ile Tukey’in post hoc testleri kullanılarak analiz edilmiştir (α = 5%). Sonuçlar: %2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX solüsyonları, biyofilim oluşumunu belirgin biçimde yok etmiş ve inhibe etmiştir (p < 0,0001). Canlı koloni sayısını azaltma açısından ise, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX, tüm uygulama yöntemleri kapsamında hem 1 hem de 5 dakika süreyle etkili olmuştur (p < 0,05). Buna karşılık, %2,5 NaOCl yalnızca ultrasonik karıştırma altında 5 dakika boyunca etkili olmuştur (p < 0,05). Densitometre ölçümleri, gruplar arasında istatistiksel olarak anlamlı bir fark göstermemiştir (p > 0,05). Sonuçlar: Genel olarak, sonuçlar simüle edilen deney koşulları altında gutta-percha konilerinin dezenfeksiyonunda %2 CHX ve %2,5 Ca(OCl)2’nin daha üstün performans sergilediğini ortaya koymuştur.
Anahtar kelimeler: Enterococcus faecalis. Kalsiyum bileşikleri. Klorheksidin. Gutta-percha. Sodyum hipoklorit.

Giriş

Gutta-percha, boyutsal kararlılığı yeterli, radyopasifitesi tatmin edici, biyokompatibildir ve termoplastiktir; bu nedenle, endodontik sızdırmazlık malzemesiyle birlikte kök kanal tedavilerinde tarihsel olarak kullanılan bir dolgu malzemesidir. Gutta-perchanın yapısı gereği, ıslak veya kuru ısı sterilizasyon prosesine tabi tutulamaz. Bu nedenle, antiseptik solüsyonlara daldırılarak yapılan kimyasal dezenfeksiyon önerilir.

Gutta-percha konilerini dezenfekte etmek için birçok kimyasal ajan önerilmiştir; bunlar arasında sodyum hipoklorit (NaOCl) ve klorheksidin (CHX) yer alır. İdeal bir dezenfektan, koni yapısını bozmadan hızlı bir dezenfeksiyonu sağlamalıdır3. NaOCl, endodontide dünya çapında en yaygın olarak kullanılan antimikrobiyal irrigasyon solüsyonudur; etkili olmasına rağmen, koniler üzerinde kalıntı kristallerin birikmesinin, sızdırmazlık malzemesiyle bağlanmayı zorlaştırarak mikrosızdırmaya yol açabileceğine dair kanıtlar bulunmaktadır. Önceki çalışmalar ayrıca CHX’nin gutta-percha konilerini dezenfekte etmede etkili olduğunu da belirtmiştir. Ancak ana irrigasyon maddesi olarak NaOCl kullanıldığında, koni yüzeyindeki herhangi bir CHX kalıntısı, kök kanalı içindeki NaOCl kalıntılarıyla kimyasal olarak etkileşebilir; bu durum, yetersiz kurutma veya anatomik karmaşıklıklar nedeniyle ortaya çıkabilir. Bu etkileşim, tedavi edilen kök kanalının sızdırmazlığını bozan toksik bir bileşik olan para-kloroanilin oluşumuna yol açabilir.

Son zamanlarda, kalsiyum hipoklorit [Ca(OCl)2]nin; tatmin edici antimikrobiyal etkisi ve doku çözme kapasitesi, dentin özellikleriyle daha yüksek uyumluluğu ile yapıştırıcı işlemlerinde daha az tahriş oluşturma yönünden End2 odontide kullanımı değerlendirilmektedir. Ancak söz konusu potansiyel rağmen, gutta-percha konilerinin dezenfeksiyonunda Ca(OCl)2’nin etkinliğini değerlendiren çalışmalar oldukça azdır ve bu amaçla kullanımının uygulanabilirliğini doğrulamak için mutlaka 2 yürütülmelidir. Bunun yanı sıra, bu bağlamda dezenfeksiyonu artırma amacıyla farklı karıştırma yöntemlerinin etkisine ilişkin ek incelemeler de sınırlıdır. Son olarak, endodontik başarısızlıklarda tespit edilen başlıca mikroorganizma E. faecalis olduğundan, bunun yok edilmesi açısından solüsyonların etkinliğinin değerlendirilmesi son derece önemlidir. Bu nedenle, bu çalışmanın amacı; farklı karıştırma protokollerinde uygulanan 2,5% Ca(OCl)2, 2,5% NaOCl ve 2% CHX solüsyonlarının, E. faecalis ile kontamine olmuş gutta-percha konilerini dezenfekte etme konusundaki etkinliğini karşılaştırmaktır. Çalışmada, uygulama yöntemi ne olursa olsun, farklı solüsyonların antibakteriyel etkisi arasında herhangi bir fark bulunmayacağı yönünde sıfır hipotezi benimsenmiştir.

Malzemeler ve Yöntemler

Bakteriyel suş ve kültürel koşullar

Deneylerde kullanılan suş, Amerikan Tip Kültür Koleksiyonu’ndan temin edilen E. faecalis (ATCC 29212) idi. Mikroorganizmalar gliserol içeren bir besi ortamında korunmuş ve −80°C’de saklanmıştır. Kullanılmadan önce örnek çözüldükten sonra Beyin Kalp Infüzyonu (BHI) bulamaç ortamına aşılanmış ve 24 saat boyunca inkübe edilmiştir.

Minimum inhibitör ve minimum bakterisidal konsantrasyonların belirlenmesi

Minimum inhibitory konsantrasyon (MİK), 96 kuyucuklu bir plakta, brot mikrodilüsyon yöntemi kullanılarak belirlendi. Minimum bakterisidal konsantrasyonu tespit etmek için… Tahmin (MBC), her kuyudan 1 μL alınıp Mueller-Hinton agar üzerine plaklanır ve 37°C’de anaerobik koşullarda 24 saat boyunca inkübe edilir. Daha sonra koloniler tespit edilir ve mikrobiyal büyümenin gözlenmediği en düşük konsantrasyon MBC olarak kaydedilir.

Biyofilmin oluşumu Biyofilm, daha önce tanımlanmış koşulların modifikasyonlarıyla üretilmiştir. Uygulanan tedaviler arasında, %2,5’lik Ca(OCl)2, %2,5’lik NaOCl ve %2’lik CHX’nin MIC, 2 katı MIC ve 4 katı MIC değerleri yer almıştır. Kontrol amaçları doğrultusunda, pozitif kontrol olarak yalnızca Mueller-Hinton besi ortamında bulunan E. faecalis suşu kullanılmış; negatif kontrol olarak ise sadece Mueller-Hinton besi ortamı görev yapmıştır.

Kristal moriyon assayı Biyokütle, daha önce açıklanan şekilde kristal moriyon boyama tekniği kullanılarak nicelendirilmiştir. Antibiyo film etkinliği, pozitif kontrol (Mueller-Hinton besi suyu + E. faecalis) ile tedaviler arasındaki optik yoğunluk farkının ölçülmesi yoluyla değerlendirilmiştir.

Biyofilm inhibisyon deneyi E. faecalis içeren bir süspansiyon, Mueller-Hinton besi ortamı ve deneylerde kullanılan tedavilerin anti-adhezyon özellikleri, mikroplak biyofilm deneyi yöntemi kullanılarak değerlendirildi. Deney, 37°C’de anaerobik koşullarda 24 saat boyunca inkübe edilmiştir. Deney, önceki bölümde açıklanan yöntem doğrultusunda gerçekleştirilmiş olup, E. faecalis içeren Mueller-Hinton besi ortamı pozitif kontrol olarak kabul edilmiş ve inhibisyon yüzdesi; Optik yoğunluk değeri / Optik yoğunluk kontrolü × 100 formülüyle hesaplanmıştır.

Koloni oluşturan birimlerin (CFU) sayımı Metodoloji, Pauletto ve ark. tarafından belirtilen yaklaşımı izlemiştir. Doksan sekiz adet gutta-percha konisi (Dentsply Maillefer, Ballaigues, İsviçre) kullanılmış ve aseptik koşullarda açılmıştır. Her bir gutta-percha konisi, 37°C’de 48 saat boyunca mikro tüp içindeki bakteriyel süspansiyon içinde batırılarak ayrı ayrı kontamine edilmiştir. Steriliteyi sağlamak ve kontaminasyonu izlemek amacıyla, sterilizasyon sonrası steriliti teyit etmek için iki koni beslenme ortamına eklendi. Ayrıca, kontaminasyonun yokluğunu doğrulamak üzere her 24 saatte bir üçer koni plaklanmıştır.

Olumlu kontroller; tedavi edilmemiş salin içinde batırılmış 18 gutta-percha konusundan oluşurken, olumsuz kontroller ise her malzemeden alınmış 18 temiz örnekten oluşmuştur. Geri kalan 54 konu, dekontaminasyon için kullanılan solüsyona göre üç deneysel gruba ayrılmıştır: %2,5 NaOCl (n=18), %2,5 Ca(OCl)2 2 (n=18) veya %2 CHX (n=18). Her grup farklı yöntemlerle işlem görmüştür: karıştırma olmadan (3 konu 1 dakika ve 3 konu 5 dakika), ultrasonik karıştırma (3 konu 1 dakika ve 3 konu 5 dakika) veya Easy Clean (Easy Equipamentos Odontológicos, Belo Horizonte, MG, Brezilya) ile karıştırma (3 konu 1 dakika ve 3 konu 5 dakika). Karıştırma prosedürü kapsamında, Easy Clean #25.04 plastik dosya (Easy Equipamentos Odontológicos) 20.000 devir/dakika hızında bir el aletine bağlanmış; E1 Irrisonic ucu (Helse Ultrasonic, Ribeirão Preto, SP, Brezilya) ise bir ultrasonik cihaza (Sonic Laxis BP LED, Schuster, Santa Maria, RS, Brezilya) takılmış ve güç seviyesi %20 olarak ayarlanmıştır.

Tedavi sonrası, tüm örnekler 2 mL’lik Mueller-Hinton besi suyu içeren bir mikro tübün içine yerleştirilerek 37°C’de 48 saat boyunca inkübe edildi. Her deney ve kontrol grubundan örnekler rastgele seçilerek agar plaklarına ekildi, 37°C’de inkübe edildi ve 2 gün sonra büyüme açısından incelendi. Mikrobiyal büyümenin gözlemlenmesi durumunda, bakteriler koloni morfolojisi ve Gram boyaması ile E. faecalis için doğrulandı. Hücre sayısı, eklendikten sonra belirlenen koloni formasyon birimleri (CFU) üzerinden hesaplandı.

Densitometre ile ölçüm Bakterilerin büyümesi, Vági ve ark. tarafından yapılan ve bazı değişikliklerle uyarlanan yöntem doğrultusunda, bakteri süspansiyonunun optik yoğunluğunun densitometrik olarak ölçümlenmesi yoluyla izlenmiştir. Spektrofotometreye 3 ml besleyici sıvı ortam alınmış; incelenen her bir örneğe karşılık iki adet erlenmeyer hazırlanmıştır. Ortam yalnızca içeren erlenmeyer kontrol olarak ölçülmüştür. Ayrıca, ortama herhangi bir katkı maddesi eklenmeden bir bakteri kontrolü de uygulanmıştır.

Tedavilerin ardından bakteri yoğunluğunu elde etmek için, numunelerin optik yoğunluğu 570 nm dalga boyunda densitometri yöntemiyle (Carl-Zeiss, Gottingen, Almanya) ölçüldü. Bakterilerin büyümesi, suspansiyonun bulanıklığı şeklinde ortaya çıkar ve bu durum optik yoğunluğun yükselmesiyle izlenebilir. İnhibisyon yüzdesi, ölçüm sırasında alınan numune optik yoğunluğu (ODX) ile kontrol numunesinin optik yoğunluğu (ODAC) arasındaki oran olarak tanımlanır.

Taramalı elektron mikroskobu (SEM) Taramalı elektron mikroskobu görüntülemeleri, %2,5’lik Ca(OCl)2’nin etkisini değerlendirmek amacıyla gerçekleştirildi. 35 mm’lik polistiren plakalar üzerinde oluşan biyofilmin, farklı tedavi biçimleri ve sürelerde uygulanan %2,5’lik Ca(OCl)2 sonrasında 2 SEM yöntemiyle analizi yapıldı. Plakalardaki biyofilim distile su ile durulanıp, 60°C’de 1 saat boyunca fırında sabitlendi. Ardından örnekler altın kaplama ile sputter kaplandı (sputter kaplama 108A; Cressington Scientific Instruments Inc., Watford, İngiltere). JSM-6360 taramalı elektron mikroskobu (JEOL, Tokyo, Japonya) kullanıldı.

İstatistiksel analiz: Shapiro-Wilk testi, toplanan değerlerin normal dağılıma sahip olduğunu göstermiştir. Bu nedenle, tüm veriler tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ve Tukey’in post hoc testleri ile değerlendirilmiştir. Biyofilmin inhibisyonu ve yıkımı deneyinde, pozitif kontrol ile karşılaştırıldığında p < 0,05 (*), p < 0,01 (**), p < 0,001 (***) ve p < 0,0001 (****) değerleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir. Yaşayabilir koloni sayımı ve antibakteriyel etkinlik açısından ise, aynı karıştırma sürecindeki salin ile tedaviler arasında (a) ve aynı tedavinin farklı karıştırma süreçleri ile ultrasonik karıştırma arasındaki karşılaştırma (b) sırasında p < 0,05 değerleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir. Tüm analizler GraphPad Prism 8.0.1 yazılımı (GraphPad Software Inc., San Diego, CA, ABD) kullanılarak gerçekleştirilmiş olup.

Sonuçlar

Minimum inhibitory ve minimum bakterisidal konsantrasyonların belirlenmesi Tablo 1, 2 E. faecalis suşu üzerinde NaOCl %2,5, Ca(OCl)2 %2,5 ve CHX %2’nin MIC ve MBC değerlerini göstermektedir. Her iki indekste de CHX en iyi etkinliği sergilemiştir.

Tablo 1. E. faecalis’e karşı %2,5’lik NaOCl, %2,5’lik Ca(OCl)2 ve %2’lik CHX’nin asgari inhibe edici konsantrasyonu (MIC) ile asgari bakterisitik konsantrasyonları (MBC)

Biyofilm inhibisyonu ve yok edilmesi deneyi: %2,5’lik NaOCl ile %2,5’lik Ca(OCl)2, kontrol grubuna kıyasla belirgin biyofilm yok etme etkisi gösterirken (p < 0,01), %2’lik CHX ise tatmin edici bir etki göstermedi (p > 0,05). En iyi performansı sergileyen bileşikler, biyofilmi %83,5 oranında azaltan 4xMIC konsantrasyonundaki %2,5’lik NaOCl (2,6 mg/ml) ve biyofilmi %76,7 oranında yok eden 2xMIC konsantrasyonundaki %2,5’lik Ca(OCl)2 (0,625 mg/ml) oldu (p < 0,0001) (Şekil 1A). Biyofilm inhibisyonu açısından en iyi sonuçları veren bileşik, 0,5xMIC konsantrasyonundaki %2’lik CHX olup, biyofilmi %87,6 oranında inhibitör etki altında tuttu (p < 0,0001) (Şekil 1B). Veriler, kontrol grubuyla karşılaştırıldığında istatistiksel olarak anlamlı kabul edildi.

Şekil 1. Farklı konsantrasyonlarda uygulanan %2,5’lik NaOCl, %2,5’lik Ca(OCl)2 ve %2’lik CHX ile tedavi edilen E. faecalis’in antibiyofilmlik etkinliği (A) ve biofilmin inhibisyonu (B). Veriler ortalamayla ± standart sapma olarak ifade edilmiştir. Tukey testiyle birlikte varyans analizi (ANOVA) gerçekleştirilmiş olup, pozitif kontrolle karşılaştırıldığında p < 0,05 (*) , p < 0,01 (**), p < 0,001 (***) ve p < 0,0001 (****) değerleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir.

Şekil 2. E. faecalis’e karşı, farklı karıştırma sürelerinde; 1 dakika (A) ve 5 dakika (B) için, %2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX ile tedavi edilen biyofilmlerin canlı koloni sayımı. Ayrıca, %2,5 NaOCl, %2,5 Ca(OCl)2 ve %2 CHX’in E. faecalis’e karşı, farklı karıştırma sürelerinde; 1 dakika (C) ve 5 dakika (D) için densitometre yöntemiyle belirlenen antibakteriyel etkinliği gösterilmektedir. Veriler ortalamayla ± standart sapma şeklinde ifade edilmiştir. Değişkenler arasındaki farkların istatistiksel olarak anlamlı olup olmadığı değerlendirilirken, varyans analizi (ANOVA) ve ardından Tukey testi uygulanmıştır. P < 0,05 değerleri istatistiksel olarak anlamlı kabul edilmiştir: (a) aynı karıştırma sürecindeki tuzlu su ile tedaviler arasında; (b) aynı tedavinin farklı karıştırma süreçleri arasında, ultrasonik karıştırma koşullarında.

Koloni oluşturan birimlerin (CFU) sayımı 2,5% NaOCl ile yapılan tedavi, uygulama yöntemi ne olursa olsun, salin çözeltiyle karşılaştırıldığında 1 dakikalık maruziyette herhangi bir fark göstermemiştir (p > 0,05). 2,5% Ca(OCl)2 ve 2% CHX ile yapılan tedavilerde ise, salin çözeltisiyle karşılaştırıldığında anlamlı bir azalma görülmüştür (p < 0,05). 5 dakika boyunca çalkalandığında, ultrasonik karıştırma altında NaOCl ile yapılan tedavi, salin çözeltisiyle karşılaştırıldığında anlamlı bir azalmaya yol açmış; ayrıca 1 dakikada gözlenen diğer sonuçlar da korunmuştur (p < 0,05). Sayım sonuçları Şekil 2A ve Şekil 2B’de sunulmaktadır.

Densitometre ile ölçüm Her durumda, büyüme eğrileri salin ile elde edilenlerle karşılaştırıldı. Tüm tedaviler, salinli kontrol grubuyla kıyaslandığında optik yoğunlukta belirgin bir azalma gösterdi; ancak karıştırılmayan ve Easy clean karıştırma yöntemi kullanılan 2,5% NaOCl çözümünde bu azalma gözlenmedi. Test edilen her iki zamanda da 2,5% Ca(OCl)2 veya CHX ile tedavi edildiğinde, farklı karıştırma süreçleri arasında yoğunluk azalmasında istatistiksel olarak anlamlı bir fark bulunmadı; bkz. Şekil 2C ve 2D. 2

Taramalı elektron mikroskobisi: Şekil 3, biyofilmin yıkımını göstermektedir. SEM fotoğrafları elde edilen sonuçları vurgulamaktadır.

Şekil 3. Salin çözeltisiyle 1 (A) ve 5 (B) dakika süreyle; ayrıca farklı karıştırma koşullarında 2,5% Ca(OCl)2 ile tedavi edilen E. faecalis biofilminin MEC değerleri – karıştırılmaması durumunda 1 (C) ve 5 (D) dakika; ultrasonik karıştırma ile 1 (E) ve 5 (F) dakika; ve Easy clean karıştırma yöntemiyle 1 (G) ve 5 (H) dakika.

Tartışma Bu çalışma, farklı karıştırma yöntemleri kullanılarak Ca(OCl)2 solüsyonu ile gutta-percha konilerinin hızlı dezenfeksiyonunu değerlendirmekte; sonuçlar, bu amaç için tarihçe boyunca kullanılan NaOCl ve CHX solüsyonlarıyla karşılaştırılmaktadır. Bulgular, değişik antibakteriyel etkilere işaret etmektedir. Bu in vitro çalışmada simüle edilen tüm senaryolarda E. faecalis’e karşı etkiler, başlangıçta formüle edilen sıfır hipotezin reddedilmesine yol açmıştır.

Kültür çanaklarında yapılan testlerin sonuçları, E. faecalis’in oluşturduğu biyofilmi inhibe etmede en etkili çözümün %2’lik CHX olduğunu; ayrıca %2,5’lik NaOCl ve %2,5’lik Ca(OCl)2 çözümlerinin ilgili mikrobiyal iki türü ortadan kaldırmada daha yüksek etkiye sahip olduğunu göstermiştir. Endodontik biyofilm karşıtı antibakteriyel etkinin hangi çözeltide daha üstün olduğuna dair literatürde bazı tartışmalar olsa da, bu senaryoda klorlu çözülmelerin daha etkili olduğu kabul edilmesi muhtemeldir; zira bunlar güçlü oksidantlardır ve iyonik disosiasyon sırasında büyük miktarda hipokloröz asit salgılarlar; bu da çözeltinin antibakteriyel etkisinden doğrudan sorumlu olan etken maddedir. Bu bağlamda, mikroorganizmalar için vazgeçilmez olan enzimler irreversible şekilde okside edilir, bakteriyal hücrenin metabolik fonksiyonları devre dışı bırakılır ve böylece hücre ölümü oluşur.

Gutta-percha konilerinin yüzeyindeki CFU’lar açısından, bulgularımız şunu vurgulamaktadır: 1 dakikalık dekontaminasyon süresi için, uygulanan yöntemden bağımsız olarak 2,5% NaOCl kullanımı, kontrol grubu ile karşılaştırılabilir verilerle birlikte, dekontaminasyon açısından etkili olmamıştır. 2,5% Ca(OCl)2 ve 2% CHX çözülleri ise, tüm uygulama yöntemleri bakımından kontrol grubuna göre etkilidir. 5 dakikalık dekontaminasyon süresi için de aynı sonuçlar devam etmiş; buna ek olarak, ultrasonik olarak karıştırılan 2,5% NaOCl grubunun kontrol grubundan daha iyi performans gösterdiği gözlenmiştir. NaOCl’nin hücre kültürü kuyularındaki E. faecalis’i yok etme konusunda etkili sonuçlar verdiği ve gutta-percha konilerini dekontamine etmede iyi bir performans sergilemediği tartışmalı olsa da, irrigantların ve kök kanalı ilaçlarının antibakteriyel etkisinin yüzey türü ve bileşenlerinden etkilenebileceğini vurgulayan önceki çalışmalar mevcuttur. Bu nedenle, bu öneriyi daha iyi aydınlatmak amacıyla ek incelemelerin yürütülmesi gerekmektedir.

Bu çalışmanın bulgularının aksine, önceki bir araştırma Candida albicans ile kontamine olmuş gutta-percha konilerini dezenfekte etmede üç solüsyon için benzer sonuçlar göstermiştir. Bu nedenle, solüsyonların etkinliğinin test edilen mikroorganizmaya göre değişebileceğini düşünmek makuldür; gelecekteki araştırmalar bu yönü incelemeli ve endodontik enfeksiyonlarda yaygın olarak görülen mikroorganizmaları temsil eden karma biyofilmleri simüle etmelidir. 2% CHX’in olumlu performansına gelince, bu bulgu sonuçlarımızda açıklanan ve daha önceki çalışmalarla da uyumlu olan MBC’siyle muhtemelen açıklanabilir3. 2,5% Ca(OCl)2’nin etkinliği ise, Ca(OCl)2’nin NaOCl’e kıyasla daha yüksek aktif klor oranına sahip olması ve iyonik disosiasyonu sonucunda daha fazla hipokloröz asit salınması nedeniyle ortaya çıkar; bu da solüsyonun antibakteriyel etkisinin daha güçlü olmasını sağlar. Buna paralel olarak, bakteri yoğunluğu bulgularımız da 2,5% Ca(OCl)2 ve 2% CHX kullanıldığında bakteri azalmasında daha belirgin bir eğilim göstermektedir. SEM görüntüleri, Ca(OCl)2 için elde edilen sonuçları vurgulamaktadır. NaOCl’in dünya çapında kök kanalının ana irigasyon solüsyonu olarak en yaygın kullanılan çözüm olduğu ve NaOCl ile CHX arasında toksik bir yan ürün (para-kloroanilin) oluşan kimyasal bir etkileşim meydana geldiği; bu durumun kök dolgusunun kalitesini bozabildiği göz önüne alındığında, bulgularımız ışığında gutta-percha’nın hızlı dezenfeksiyonu için Ca(OCl)2 kullanımını önermek mantıklıdır. koniler, çünkü NaOCl’e kıyasla daha iyi performans göstermiştir. Öte yandan, bulgularımız ışığında, kök kanalının ana irriğanı olarak CHX’i kullanan profesyoneller için, konileri dezenfekte etmek üzere aynı solüsyonu kullanmak daha pratik hale gelmektedir. Bir diğer olasılık olarak, CHX ile Ca(OCl)2 arasındaki kimyasal etkileşimin, bir çökelme oluşmasına neden olsa da, 2 para-kloroanilin üretmediği vurgulanmaktadır. Bu nedenle, oluşan bileşiğin doğruluğunu ve kök kanalı sealing’ine müdahale edip etmediğini ortaya koymak; ayrıca ana irriğanın CHX olduğu durumlarda konileri dezenfekte etmek için potansiyel uygulanabilirliğini teyit etmek amacıyla daha fazla çalışma yapılması gerekmektedir.

Genel olarak, gutta-percha konilerini dekontamine etmek amacıyla test çözeltilerinin karıştırılma yöntemleri açısından istatistiksel olarak anlamlı farklılıklar gözlemlenmedi. Mevcut literatürde, gutta-percha konilerini dezenfekte etmek için karıştırma yöntemlerine ilişkin çalışmaların eksik olduğunu vurgulamak gerekir; bu durum bulguların karşılaştırılmasını zorlaştırmaktadır. Bununla birlikte, daha önce yapılan bir sistematik inceleme, irigasyon solüsyonunun karıştırılıp karıştırılmamasının kök kanalı dezenfeksiyonu üzerinde önemli bir fark yaratmadığını göstermiş; bu da dekontaminasyon sürecinde asıl rolün irigasyon solüsyonu ve onun özellikleri tarafından oynandığını ortaya koymuştur.

Bulgularımız, NaOCl’e kıyasla üstün performansı nedeniyle Ca(OCl)2’nin gutta-percha konilerinin hızlı dezenfeksiyonu için önerilebileceğini öne sürse de, bu tavsiyenin kullanılan malzemeler ve bakteri türlerinden etkilenebileceğini de dikkate almak önemlidir. Bu, söz konusu ön çalışma için bir sınırlılıktır. Tükürük çok sayıda ve çeşitli bakteri türü içerdiğinden, bu sonuçların doğrulanması için farklı bakteri türlerini de içeren daha fazla araştırma gerekmektedir. Son olarak, Ca(OCl)2’nin gutta-percha konilerinin mikroyapısına etkisi ile bunun endodontik tedavi üzerindeki olası sonuçlarının değerlendirilmesine yönelik ek çalışmalar yürütülmelidir.

Bu in vitro çalışmanın sınırlılıklarına rağmen, gutta-percha konilerinin dekontaminasyonu için Ca(OCl)2’nin kullanımı, çözeltinin kimyasal bileşiminden kaynaklanan destekle, umut verici bir alternatif gibi görünmektedir. İyonik disosiasyon sırasında Ca(OCl)2 iki molekül hipokloröz asit (HOCl) salgılarken, NaOCl yalnızca bir molekül salgılar. Bu nedenle, Ca(OCl)2’de klorun konsantrasyonu daha yüksektir ve bu da dezenfeksiyon kapasitesini artırır. Bununla birlikte, bu solüsyonun endodontik uygulamada kullanılması, daha sağlam bulgular elde etmek ve onun endodontik prosedürlerde potansiyel olarak yer almasını yönlendirmek amacıyla klinik araştırmalar gerektirmektedir.

Sonuç olarak, bu çalışmanın sonuçları, E. faecalis ile kontamine olmuş gutta-percha konilerin hızlı dezenfeksiyonunda %2’lik CHX ile %2,5’lik Ca(OCl)2’nin etkinliğini doğrulamaktadır; karıştırma gerektirmeyen uygulama yöntemleri, ultrasonik karıştırma ve Easy Clean ile karıştırma arasında istatistiksel olarak anlamlı bir fark bulunmamaktadır. %2,5’lik NaOCl ise yalnızca 5 dakika süren ultrasonik karıştırmanın ardından etkili olmuştur.

Teşekkürler Destekleri nedeniyle Yükseköğretim Personeli Yetkinleştirme Koordinasyonu Kurulu’na (CAPES) teşekkür ederiz.

Çıkar çatışması beyanı Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan etmektedir.

Veri erişilebilirliği Bu makaleye ilişkin veri setleri, ilgili yazar tarafından talep edildiğinde sunulacaktır.

Yazar Katkısı: Guilherme Pauletto: Konseptleme; veri yönetimi; inceleme; metodoloji; yazılım; doğrulama; görselleştirme; orijinal taslak yazımı; inceleme ve düzenleme. Pedro Henrique Fortes Guerim: Veri yönetimi; inceleme; metodoloji; yazılım; doğrulama; görselleştirme; inceleme ve düzenleme. Arthur Brites Barbosa: Veri yönetimi; inceleme; metodoloji; yazılım; doğrulama; görselleştirme; inceleme ve düzenleme. Natália de Freitas Daudt: Veri yönetimi; metodoloji; doğrulama; inceleme ve düzenleme. Leonardo Quintana Soares Lopes: Veri yönetimi; metodoloji; yazılım; resmi analiz; doğrulama; orijinal taslak yazımı; inceleme ve düzenleme. Patrícia Kolling Marquezan: Konseptleme; inceleme; metodoloji; resmi analiz; proje yönetimi; kaynaklar; yazılım; denetim; doğrulama; görselleştirme; orijinal taslak yazımı; inceleme ve düzenleme. Carlos Alexandre Souza Bier: Konseptleme; fon sağlama; inceleme; metodoloji; proje yönetimi; kaynaklar; yazılım; denetim; doğrulama; görselleştirme; inceleme ve düzenleme. Tüm yazarlar, makalenin nihai versiyonunu aktif olarak gözden geçirmiş ve onaylamıştır.

Atıf ve kapsam

Pauletto G, Guerim PHF, Barbosa AB, Daudt NF, Lopes LQS, Marquezan PK, ve ark. Enterococcus faecalis ile kontamine olmuş gutta-percha konilerinin kalsiyum hipoklorit, sodyum hipoklorit ve klorheksidin kullanılarak dezenfeksiyonu. Brezilya Ağız ve Diş Hizmetleri Dergisi. 2026;25:e267486. https://doi.org/10.20396/bjos.v25i00.8677486

Creative Commons Atıf 4.0 Uluslararası Lisansı (CC BY 4.0) kapsamında yeniden yayımlanmıştır: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.

Bu bağımsız in-vitro çalışma, ürünün test materyalleri için kimyasal dezenfeksiyon protokollerini değerlendirmektedir. Çalışma, Hygendo Gutta Percha Uçları’nın performansını, antimikrobiyal etkinliğini, dezenfeksiyon verimliliğini veya klinik sonucunu test etmemekte, değerlendirmemekte, onaylamamakta ve belirlememektedir. Hygendo Katalog resmi ayrı bir marka malzemesidir ve çalışmaya dahil değildir.

Herhangi bir üçüncü taraf ürününün veya cihazının adları, yalnızca çalışma metodolojisini sadakatle yeniden üretmek veya tercüme etmek amacıyla yer almaktadır; bunlar Hygendo tarafından yapılan bir karşılaştırma, tavsiye veya bağlılık ifadesi değildir.

E-posta:
info@hygendo.com

WhatsApp:
8613719176340

Tel:
+86 13719176340

Adres:
Çin, Guangdong Eyaleti, Guangzhou Şehri, Liwan İlçesi, Huawan Yolu, No. 650, Oda 218